La selezione dei tamponi deve tenere conto della stabilità del target, del microambiente di legame e del legame aspecifico minimo nello scenario applicativo effettivo. Proteine ​​non correlate, detergenti non ionici e concentrazioni saline fisiologiche contribuiscono a ridurre il background. Esistono anche altre condizioni, ad esempio alcuni target potrebbero richiedere l'aggiunta di cationi bivalenti o altri cofattori al tampone, i cofattori proteici possono essere co-fissati con il target, possono essere aggiunti al tampone di smistamento e possono persino essere utilizzati come mezzo per catturare il target.

Le considerazioni comuni sulla pressione di selezione includono la concentrazione delle molecole target, il tempo di legame, l'intensità del lavaggio, ecc. Altre tecniche per aumentare la pressione di selezione includono l'uso di denaturanti (come acidi, urea e guanidina), solventi organici, l'aumento della temperatura o l'aumento della concentrazione di ligandi o target concorrenti nel tampone di lavaggio.
Tra questi, il primo ciclo di screening è importante. Il primo ciclo di screening consiste nell'acquisizione del maggior numero possibile di cloni positivi dalla libreria costruita, rimuovendo al contempo i cloni non specifici. È opportuno utilizzare bersagli con rivestimento poroso o un gran numero di bersagli solubili per garantire la cattura di un elevato numero di fagi legati e preservare la diversità della libreria. Nei cicli successivi di screening, la pressione di selezione deve essere aumentata con l'aumento dell'arricchimento, lavaggi multipli e tempi di lavaggio più lunghi, in modo da poter selezionare i cloni ad alta affinità.

Tag antigenici e materiali di supporto: il processo di screening consiste nello screening di tutte le sostanze presenti sui coniugati antigenici, come tag, proteine ​​di fusione e substrati di supporto. Lo screening negativo di anticorpi non target può limitare l'arricchimento di anticorpi diversi dall'antigene target.
Cellule intere, liposomi, dischi nanofosfolipidici e VLP possono essere sottoposti a screening negativo utilizzando cellule transfettate simulate o cellule non transfettate durante lo screening di linee cellulari transfettate.
Rimozione di miscele di antigeni complessi È possibile eseguire uno screening negativo rigoroso per molecole bersaglio sconosciute o complesse, come cellule intere o proteine ​​impure.
La strategia degli anticorpi contro siti specifici di antigeni consiste nell'eluare l'anticorpo che può competere con il ligando aggiungendo un'elevata concentrazione di ligandi, mentre l'altra consiste nel bloccare l'anticorpo.

*La scoperta di anticorpi è diventata sempre più importante nella medicina moderna. Esistono diversi approcci per la scoperta di anticorpi, ma la tecnologia "phage display" è maggiormente utilizzata in ambito medico. Dal 1990, sono stati utilizzati diversi formati di anticorpi per costruire librerie fagiche, tra cui VH, VHH, scFv, diabodies e anticorpi Fab.
*Le librerie di peptidi fagici consentono la rapida determinazione della sequenza degli epitopi proteici e sono diventate un potente strumento per indagare l'interazione tra epitopi e recettori antigenici
*I frammenti di anticorpi sono fusi al G3P del fago M13 e, clonando un gran numero di geni che codificano un frammento di anticorpo, è possibile generare grandi librerie di anticorpi phage display da cui è possibile selezionare molti anticorpi diversi.
*Il sistema di visualizzazione dei fagi T7 presenta numerosi vantaggi, tra cui semplicità, elevata sicurezza, stabilità, facile conservazione e trasporto, per cui il sistema viene utilizzato nei vaccini preventivi e terapeutici.
*Il sistema di visualizzazione dei fagi T7 può rilevare vari antigeni, come gli antigeni di superficie di microrganismi patogeni e gli antigeni tumorali.